病理组织学常用制备技术

一、组织的固定(一)固定的概念应用各种方法使病理标本尽可能保持隔离前状态的过程称为固定。

病理标本(样本)隔离后，由于微环境的改变，会发生自溶和/或腐败，破坏其结构。固定化的目的和机理是:①使蛋白质凝固，停止或减少分解代谢酶的作用，防止自溶，保存组织和细胞的离体结构状态，包括保存组织或细胞的抗原性，使抗原不丧失活性，不分散。②保存组织和细胞中的蛋白质、脂肪、糖原、部分维生素和病原堆积，维持病变的特异性。(3)将上述物质制成不溶状态，防止和减少制膜过程中的人为溶解和损失。④有助于染色。

固定方法有:①物理方法，如低温冷冻、干冰(即固体无水碳酸)冷冻和[/k0/]脱水、石蜡浸润等。(2)化学法，用各种化学溶液作为固定剂，使组织细胞进入固定状态。这是中国最常用的方法。

标本取出体外后应尽快进行固定。小标本取材后可直接放入固定液中，大标本应在手术前或手术后放入固定液中。

固定液与试样的比例不得小于试样体积的5倍。如有特殊要求，应提前选择相应的固定剂。如果要检查糖原，应该选择无水乙醇作为固定剂。

注视时间要适当。小标本(如胃粘膜等。)可保存2 ~ 4小时，大标本宜保存12 ~ 2~4h，但不能太久，以免影响抗原性，造成免疫组化操作困难。